Мозаика – одна из самых опасных вирусных болезней, поражающих культурные растения. Эффективных методов борьбы с ней на сегодняшний лень не существует, поэтому если у культуры появились симптомы данного заболевания, то ее удаляют и уничтожают.

Причины возникновения вируса мозаики картофеля

Вирус мозаики может попасть на огород различными способами. Как правило, источником заражения становятся вредители – тля, цикадки, клещи, клопы могут переносить возбудителя на дальние расстояния.

Многие виды мозаики развиваются только в жаркое время – оптимальными температурами для развития вирусов становятся показатели выше 22 градусов. Кроме того, для патологии комфортна высокая влажность воздуха, которая вкупе с температурой помогают вирусу быстрее размножаться.

Вирусы могут попасть на картофель различными способами:

• с сорной травы – для появления очага поражения на картофеле достаточно соприкосновение листьев больного растения со здоровым;
• на лапках грызунов или других животных;
• зараженный посадочный материал – нередко вирус попадает в почву с самой картошки, не обработанной по весне.

Кроме того, не исключено повторное заражение культуры, когда вирус попадает на него с другого овоща – например, томатов или баклажанов. В этом случае заражение клубней происходит через механические повреждения на картофеле.

Профилактика

Реальную помощь для лечения от мозаики могут оказать только грамотные агротехнические и профилактические меры:

Площадка некоторое время не используется, выдерживая карантинный период.

На деревьях

У косточковых и семечковых представителей флоры заболевание выглядит проявлением на коре и ветках трещин, подкожной пятнистостью листвы, искажением конфигурации фруктов с потемнением мякоти.

Все дефекты обернутся скудностью урожая и непригодностью его к употреблению. Особенно подвержена патологии груша.

Заключение диссертации по теме «Защита растений», Мельникова, Наталия Николаевна

выводы

1. В результате проведенного серомониторинга 10 вирусов в коллекциях и производственных насаждениях сирени обыкновенной, наиболее часто встречались вирусы PDV (43,9% инфицированных тесг-образцов), TBRV (41,7%), SLRSV (39,8%), ToMV (39,4%), PNRSV (35,6%), ArMV (33,7%) и RpRSV (33,7%).

2. В протестированных растениях чубушника наиболее часто выявляли CMV (61,4%), CLRV (57,1%) и TBRV (51,4%). Вирусы ArMV, SLRSV, RpRSV,

PDV и PNRSV были зарегистрированы в 28,5-38,6% тест-образцов.

3. В обследованных насаждениях спиреи наиболее часто выявлялись CMV (46,6 %), PDV (38,3 %), SLRSV (34,0 %), ArMV (30,1 %), TBRV (30,1 %) и PNRSV (30,1 %).

4. На основе анализа встречаемости вирусов во взаимосвязи с сортовым составом, возрастом насаждений и рядом других агробиологических факторов не выявлено существенных различий по видовому составу и встречаемости вирусов на сортах селекции стран СНГ по сравнению с сортами селекции стран Западной Европы. Отмечена менее высокая зараженность вирусами сортов сирени обыкновенной с белыми простыми цветками.

5. В результате изучения этиологии ряда вирусоподобных синдромов у растений сирени обыкновенной и сирени венгерской установлена взаимосвязь хлороза листьев сирени с заражением PDV, а кольцевой пятнистости листьев сирени -с комплексной инфекцией PNRSV, ArMV и ApMV.

6. Иммунодиагностика позволила установить возможность передачи вирусов с семенами сирени венгерской и сирени обыкновенной. Наиболее высокая семенная инфекция отмечена для неповирусов (RpRSV-34,7%, ArMV-28,9%, TBRV-27,0%), иларвирусов (PNRSV-25,1%, PDV-24,2%) и кукумовируса огуречной мозаики (CMV -25,2%).

7. Проведена отработка методики ИФА для массового тестирования растений древесных декоративных культур на наличие сокопереносимых вирусов. Установлено, что на сирени в условиях открытого грунта необходим 2-кратный тест: сборных образцов из вегетативных и генеративных органов в весенний период с повторным анализом молодых листьев в июне-начале июля. Для выявления комплекса вирусов на раннецветущих и летнецветущих видах спиреи целесообразно параллельное тестирование листьев и цветков.

8. Наиболее эффективное оздоровление чубушника от вирусов PNRSV и PDV достигается сочетанием суховоздушной термотерапии in vivo с экспозицией не менее 30 дней и культуры in vitro.

9. Впервые установлена возможность ингибирования RpRSV, TBRV, CLRV, SLRSV и ToMV в регенерантах чубушника с помощью антивирусных препаратов рибавирин, цианогуанидин и гипорамин.

10. В результате отработки ряда элементов технологии клонального микроразмножения отмечено преимущество питательных сред Лепуавра и WPM по сравнению с питательными средами Мурасиге-Скуга и Гамборга для культивирования in vitro эксплантов сирени. В культуре in vitro чубушника установлена целесообразность периодической замены цитокининов на ауксины с целью получения хорошо развитых побегов, пригодных для черенкования.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ПРАКТИЧЕСКОМУ ИСПОЛЬЗОВАНИЮ

Научно-исследовательским учреждениям и специализированным лабораториям, выпускающим безвирусный посадочный материал, рекомендуется:

1. Использовать оптимизированную методику отбора образцов для ИФА с целью ускоренного выделения клонов сирени, чубушника и спиреи, свободных от комплекса вирусов.

2. Заготовку семян сирени для получения семенных подвоев проводить только с маточных растений, проверенных на отсутствие вирусов

3. Для получения безвирусных клонов чубушника использовать отработанные режимы суховоздушной термотерапии in vivo, клонального микроразмножения in vitro и антивирусные препараты гипорамин, рибавирин и цианогуанидин.

При составлении материала, использовались следующие источники: